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傳出神經藥物對離體平滑肌作用實驗的臨床意義

實驗5傳出神經系統藥物對離體兔腸平滑肌的作用

目的和原理家兔小腸平滑肌上有α、β和M受體。興奮α和β受體可抑制和舒張小腸平滑肌;m受體興奮可興奮和收縮小腸平滑肌。觀察乙酰膽堿、阿托品、腎上腺素等傳出神經系統藥物對離體兔小腸平滑肌的作用,掌握離體小腸平滑肌的實驗方法。

實驗對象離體小腸(兔源)

實驗藥物① 5×10-4氯化乙酰膽堿(ACh)

② 0.5%硫酸阿托品。

③ 0.1%鹽酸腎上腺素(Adr)

④ 20%氯化鋇

實驗設備RM6240多媒體生物信號記錄與分析系統、PC80586計算機、張力傳感器、麥克斯韋浴、超級恒溫水浴、氧氣瓶、通氣鉤、高位吊瓶、量筒、燒杯、滴管、培養皿、註射器、手術剪、眼科鑷子、縫針、棉線。

實驗法

1.調試RM6240系統,使其進入肌張力測量狀態。

1.打開電腦,打開RM6240多媒體生物信號記錄與分析系統的開關。確保張力傳感器與通道1連接。

2.進入RM6240菜單。選擇通道1,並選擇<張力>,選擇

3.選擇,進入示波狀態。

4.選擇將背景網格切換到細網格,並在選項中選擇紅色作為波形顏色。至此,肌張力測試和調試完成。

二。調節儀器

將超級恒溫水浴的溫度調節至38.5±0.5℃,向麥克斯韋浴中加入30 ml臺面液體,並通入氧氣(1 ~ 2氣泡/秒)。

3.腸道標本的制備

取壹只兔子,左手提起其髂骨上部,右手用木棒擊打其後腦勺直至昏死,然後迅速剖開腹腔,切去整個空回腸,放入冷桌面液中,取出腸系膜,沖洗腸內容物,切成2厘米的小腸備用。

(4)裝入麥克斯韋爾浴中並給藥。

用縫紉針穿過腸標本的兩端。壹端打空結(約1 cm小套袖),另壹端系長線。將空結用眼鉗夾住並固定在通氣鉤上,放入麥克斯韋浴中。將另壹端長線的近端打壹個空結,掛在拉力傳感器的小鉤上,調整傳感器的高度,使預緊力為1 g,試件穩定20 min。選擇,先畫壹條正常曲線,然後按以下順序給藥。

1.將5×10-4M ACh 0.2 ml加入馬克斯韋爾浴中,用標記框在屏幕上標記給藥,觀察腸道反應。反應最明顯時,用暫停鍵將電腦轉入“示波狀態”。用tyrode沖洗腸道3次,穩定標本65438±05min,加入以下藥物。

2.將系統轉回“記錄狀態”,描出壹條正常曲線,將0.2毫升0.5%阿托品加入麥克斯韋爾浴中並做標記,觀察曲線變化,1分鐘後加入5×10-4M ACh 0.2毫升並做標記,觀察腸道反應。腸段反應。然後,在計算機轉到“示波”狀態後,使用tyrode沖洗腸道三次,直到標本穩定。

3.將系統轉回“記錄狀態”,記錄壹條正常曲線,向麥克斯韋浴中加入0.01% Adr 0.1 ml並標記,觀察曲線變化。將電腦調至“示波”狀態後,用tyrode沖洗腸道3次,直到標本穩定。

4.將系統轉回“記錄狀態”,描出壹條正常曲線,向麥克斯韋爾浴中加入0.2毫升20%的氯化鋇並作標記,觀察曲線變化。在主菜單中選擇“結束實驗”,保存實驗結果,激活工具欄,系統將進入分析狀態。

實驗結果

在主菜單中選擇“數據編輯”命令,然後通過切割和選擇切割區域,在壹個屏幕中編輯四個記錄結果。

在主菜單中設置打印項目的打印模式,記錄測量、學生和實驗信息,然後預覽和打印。

用描寫法分析正常離體腸的張力和收縮,分析加藥後的反應,並對結果進行適當的討論。

需要註意的事項

1.手術要避免牽拉腸道,導致腸道活動不暢。

2.穿過腸的時候,跨線,用單線。

3.保護張力傳感器,不要過度拉伸。

4.給藥時,直接將藥液加入麥克斯韋浴中,不要接觸線或墻壁。

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實驗10傳出神經系統藥物對離體兔腸平滑肌的作用

實驗5傳出神經系統藥物對離體兔腸平滑肌的作用

目的和原理家兔小腸平滑肌上有α、β和M受體。興奮α和β受體可抑制和舒張小腸平滑肌;m受體興奮可興奮和收縮小腸平滑肌。觀察乙酰膽堿、阿托品、腎上腺素等傳出神經系統藥物對離體兔小腸平滑肌的作用,掌握離體小腸平滑肌的實驗方法。

實驗對象離體小腸(兔源)

實驗藥物① 5×10-4氯化乙酰膽堿(ACh)

② 0.5%硫酸阿托品。

第1頁

③ 0.1%鹽酸腎上腺素(Adr)

④ 20%氯化鋇

實驗設備RM6240多媒體生物信號記錄與分析系統、PC80586計算機、張力傳感器、麥克斯韋浴、超級恒溫水浴、氧氣瓶、通氣鉤、高位吊瓶、量筒、燒杯、滴管、培養皿、註射器、手術剪、眼科鑷子、縫針、棉線。

實驗法

1.調試RM6240系統,使其進入肌張力測量狀態。

1.打開電腦,打開RM6240多媒體生物信號記錄與分析系統的開關。確保張力傳感器與通道1連接。

第2頁

2.進入RM6240菜單。選擇通道1,並選擇<張力>,選擇

3.選擇,進入示波狀態。

4.選擇將背景網格切換到細網格,並在選項中選擇紅色作為波形顏色。至此,肌張力測試和調試完成。

二。調節儀器

將超級恒溫水浴的溫度調節至38.5±0.5℃,向麥克斯韋浴中加入30 ml臺面液體,並通入氧氣(1 ~ 2氣泡/秒)。

第3頁

3.腸道標本的制備

取壹只兔子,左手提起其髂骨上部,右手用木棒擊打其後腦勺直至昏死,然後迅速剖開腹腔,切去整個空回腸,放入冷桌面液中,取出腸系膜,沖洗腸內容物,切成2厘米的小腸備用。

(4)裝入麥克斯韋爾浴中並給藥。

用縫紉針穿過腸標本的兩端。壹端打空結(約1 cm小套袖),另壹端系長線。將空結用眼鉗夾住並固定在通氣鉤上,放入麥克斯韋浴中。將另壹端長線的近端打壹個空結,掛在拉力傳感器的小鉤上,調整傳感器的高度,使預緊力為1 g,試件穩定20 min。選擇,先畫壹條正常曲線,然後按以下順序給藥。

第4頁

1.將5×10-4M ACh 0.2 ml加入馬克斯韋爾浴中,用標記框在屏幕上標記給藥,觀察腸道反應。反應最明顯時,用暫停鍵將電腦轉入“示波狀態”。用tyrode沖洗腸道3次,穩定標本65438±05min,加入以下藥物。

2.將系統轉回“記錄狀態”,描出壹條正常曲線,將0.2毫升0.5%阿托品加入麥克斯韋爾浴中並做標記,觀察曲線變化,1分鐘後加入5×10-4M ACh 0.2毫升並做標記,觀察腸道反應。腸段反應。然後,在計算機轉到“示波”狀態後,使用tyrode沖洗腸道三次,直到標本穩定。

3.將系統轉回“記錄狀態”,記錄壹條正常曲線,向麥克斯韋浴中加入0.01% Adr 0.1 ml並標記,觀察曲線變化。將電腦調至“示波”狀態後,用tyrode沖洗腸道3次,直到標本穩定。

第5頁

4.將系統轉回“記錄狀態”,描出壹條正常曲線,向麥克斯韋爾浴中加入0.2毫升20%的氯化鋇並作標記,觀察曲線變化。在主菜單中選擇“結束實驗”,保存實驗結果,激活工具欄,系統將進入分析狀態。

實驗結果

在主菜單中選擇“數據編輯”命令,然後通過切割和選擇切割區域,在壹個屏幕中編輯四個記錄結果。

在主菜單中設置打印項目的打印模式,記錄測量、學生和實驗信息,然後預覽和打印。

用描寫法分析正常離體腸的張力和收縮,分析加藥後的反應,並對結果進行適當的討論。

第6頁

需要註意的事項

1.手術要避免牽拉腸道,導致腸道活動不暢。

2.穿過腸的時候,跨線,用單線。

3.保護張力傳感器,不要過度拉伸。

4.給藥時,直接將藥液加入麥克斯韋浴中,不要接觸線或墻壁。

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