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動物血藥濃度變化曲線的實驗方法

實驗2動物體內磺胺濃度的測定:理學院專業:農藥科學。:09310110020姓名:王毅實驗二動物體內磺胺濃度的測定1目的掌握動物血液和組織中磺胺濃度的測定方法——重氮化偶合比色法。2.原理不同時間采集的血樣中帶有遊離氨基的磺胺嘧啶,在酸性介質中與亞硝酸重氮化反應後,可與N-(1萘基)乙二胺偶合生成紫色偶氮染料。以相同處理後的磺胺嘧啶標準溶液為對照,用721分光光度計比色法測定不同時間組織和血中磺胺嘧啶濃度。由於亞硝酸不穩定,實驗中采用三氯乙酸和亞硝酸鈉反應制備亞硝酸。殘留的過量亞硝酸鹽影響測定,用氨基磺酸胺分解除去。3.實驗材料1,實驗動物兔子。2.設備儀器:721光譜儀、臺秤、止血鉗、眼鉗、手術刀、手術剪、保定架、註射器、燒杯、三角瓶、試管、漏鬥、研缽、濾紙等。3.藥品和試劑10%磺胺嘧啶鈉註射液15%三氯乙酸溶液0.1%亞硝酸鈉溶液0.5%氨基磺酸胺溶液0.1% N-(1萘基)-乙二胺溶液磺胺嘧啶鈉儲存標準溶液4。測試。磺胺嘧啶鈉(1)血藥濃度的測定取動物,稱重,固定,剪斷,分離股動脈,近心處準備結紮,遠心處切開股動脈,收集空白血0.5mL,放入裝有15.5 mL蒸餾水的燒瓶中,混勻,靜置15min。(2)單劑量耳靜脈註射(100mg/kg)加2.3ml 10%磺胺嘧啶鈉註射液。(3)取樣:靜脈註射取樣時間:給藥後25分鐘、30分鐘、65±38±0h、2h、3h股動脈采血0.5ml。(4)在65438±05.5ml蒸餾水中加入每份血樣0.5mL,混勻,放置65438±05分鐘;加入4毫升15%三氯乙酸,混勻,靜置2分鐘,過濾。

(5)取3支試管,每支試管加入濾液5mL,取3支試管作測量管,加入空白對照溶液5mL,取3支試管作空白管,加入應用標準溶液5mL,在上述每支試管中加入0.5ml 0.1%亞硝酸鈉溶液作標準管(6),混勻,靜置3min (7),在每支試管中加入0.5%氨基磺酸胺溶液。靜置2min(8),分別加入0.1% N-(1萘基)-乙二胺二鹽酸鹽溶液2.5mL,混勻,靜置10min (9),與721分光光度計在550nm波長下比色。用空白管將光密度調至零點,讀取標準管並測定管的光密度,計算出遊離磺胺的含量。(10)的公式如下:管光密度的測定遊離磺胺含量= - 0.00375 mg/ml × 40標準管光密度2。組織磺胺濃度測定法(1)采血後,處死動物,取肌肉、肝臟和腎臟組織2g。(2)將組織切成塊,在研缽中加入5mL蒸餾水研磨,取上清液,用蒸餾水沖洗殘渣,回收至帶刻度的試管中,得到16mL。(3)加入4ml 15%三氯乙酸,混勻,靜置,過濾。(4)取濾液,處理並測定相同血藥濃度。(5)公式如下:管光密度的測定= - 0.00375 mg/ml × 10標準管光密度V, 實驗結果時間編號1 2 3平均值25分鐘0.160 0.160 0.160表1:30分鐘1h 2h 3h 0.258/0.450 0.640 0 0.189 0.238 0.2160 . 484樣品濃度25min 0.293表三:藥物濃度(mg/ml) 30min 1h 2h 3h肝臟0.384/0.8161.1700.886腎臟4.3肌肉7.09 VI。結果討論和總結。

1,股動脈分離手術。由於缺乏手術機會、經驗和動手能力,分離股動脈需要花費很長的時間和精力。所以10分鐘的血樣不是及時取的,而是25分鐘取的。股動脈的分離和采血要註意:註意動靜脈的區分和股動脈采血時的鈍性分離;心臟附近穿線結紮時不要刺破神經;少穿肌肉和皮膚;分離時註意神經的分離。采血後註意清理血管內的血液,避免堵塞血管;下次采血時血不能流出,用手指輕輕按壓,排出血管內的血塊。2、分光光度計的使用操作。因為測定吸光度要用壹套比色杯,但在實際操作中,比色杯使用混亂,吸光度的測定存在較大誤差。分光光度計使用註意事項:(1)為了防止光電池疲勞。不測量時,必須打開比色皿的黑盒蓋,切斷光路,以延長光電管的使用壽命。(2)手持比色皿時,手指只能握住比色皿的磨砂玻璃面,不要接觸比色皿的透光面,以免汙染。(3)清洗比色皿時,壹般先用水沖洗,再用蒸餾水沖洗。每次實驗後立即清洗比色皿。(4)測量有色溶液的吸光度時,壹定要用有色溶液多次沖洗比色皿內壁,以免改變有色溶液的濃度。另外,在測定壹系列溶液的吸光度時,通常是按照從稀到濃的順序測定,以減少測量誤差。(5)在實際分析工作中,通常根據溶液濃度的不同,選擇不同槽厚的比色皿,將溶液的吸光度控制在0.2 ~ 0.7。3.實驗錯誤總結:在(1)25分鐘和30分鐘時,由於股動脈分離不當,從耳動脈取血。但由於抽血時間長,血樣加到蒸餾水中有很多血塊,所以前兩次測得的血藥濃度較小。但在采血壹小時時,由於操作不當,多取了血樣,使得1h測得的數據過大,無法讀取吸光度數據。(2)實驗操作中沒有嚴格的要求。加樣時用的是移液管而不是精確的移液管,所以藥物的體積壹定是導致數據不準確的重要因素。

(3)吸光度的測量存在較大誤差。吸光度值要控制在0.2-0.7之間,測出來的值會比較準確,但是有些測出來的數據超出了這個範圍,所以有誤差。4.總結雖然實驗數據很不準確,令人失望,但在這次實驗中,我學到了股動脈的分離技術和動物體內磺胺濃度的測定方法,對實驗團隊和工作有了進壹步的了解和認識。雖然實驗前已經預習過,但還是遇到了很多意想不到的錯誤,這讓我更加意識到熟能生巧的意義。另外,我壹定要多做實驗,提高自己的實驗能力,還要在失敗中積累經驗,不斷總結,不斷反思,這樣才能做好研究。感謝您的閱讀,祝您生活愉快。

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實驗2動物體內磺胺濃度的測定

實驗2動物體內磺胺濃度的測定

系:理學院專業:農藥科學。:09310110020姓名:王毅

實驗2動物體內磺胺濃度的測定

1,用途

掌握測定動物血液和組織中磺胺類藥物濃度的方法&重氮化偶合比色法。

2.原則

不同時間采集的血樣中帶有遊離氨基的磺胺嘧啶,在酸性介質中用亞硝酸重氮化後,可與N-(1萘基)乙二胺偶合生成紫色偶氮染料。以同時處理的磺胺嘧啶標準溶液為對照,用721分光光度計比色法測定不同時間組織和血中磺胺嘧啶濃度。

第1頁

由於亞硝酸不穩定,實驗中采用三氯乙酸和亞硝酸鈉反應制備亞硝酸。殘留的過量亞硝酸鹽影響測定,用氨基磺酸胺分解除去。

3.實驗材料

1,實驗動物

壹只兔子。2、設備和儀器

721光譜儀、臺秤、止血鉗、眼鉗、手術刀、手術剪、保定架、註射器、燒杯、三角燒瓶、試管、漏鬥、研缽、濾紙等。3.藥物和試劑

10%磺胺嘧啶鈉註射液

第2頁

15%三氯乙酸溶液0.1%亞硝酸鈉溶液0.5%氨基磺酸胺溶液

0.1% N-(1萘基)-乙二胺溶液磺胺嘧啶鈉貯存標準溶液磺胺嘧啶鈉應用標準溶液。

4.檢測方法

1和磺胺嘧啶鈉的血藥濃度測定

(1)取動物,稱重,固定,剪斷,分離股動脈,準備近端和遠端結紮。

切斷股動脈,收集0.5mL空白血,放入裝有15.5 mL蒸餾水的燒瓶中,混勻,靜置15min。

第3頁

(2)單劑量耳靜脈註射(100mg/kg)加2.3ml 10%磺胺嘧啶鈉註射液。(3)取樣:

靜脈註射取樣時間:給藥後25分鐘、30分鐘、65±38±0小時、2小時、3小時股動脈采血0.5毫升。(4)在65438±05.5ml蒸餾水中加入每份血樣0.5mL,混勻,放置65438±05分鐘;加入15%三氯醋。

4毫升酸,混合均勻,放置2分鐘,過濾。

(5)取3支試管,每支試管加入5mL濾液,即為測量管。

取3支試管,加入5mL空白對照溶液,取3支試管作空白管,加入5mL應用標準溶液作標準管。

第4頁

(6)在上述各管中加入0.1%亞硝酸鈉溶液0.5毫升,混勻,放置3 min。(7)加入0.5毫升0.5%氨基磺酸胺溶液,混合均勻,靜置2分鐘。

(8)分別加入2.5毫升0.1% N-(1萘基)-乙二胺二鹽酸鹽溶液,充分混合,放置10分鐘(9)用721分光光度計在550納米波長下比色。

用空白管將光密度調至零點,讀取標準管並測定管的光密度,計算出遊離磺胺的含量。(10)公式如下:

測量管子的光密度

第5頁

遊離磺胺含量= - 0.00375 mg/ml × 40標準管光密度。

2、組織磺胺藥物濃度測定方法

(1)采血後,處死動物,取肌肉2g,肝臟2g,腎臟2g。

(2)將組織切成塊,在研缽中加入5mL蒸餾水研磨,取上清液,用蒸餾水沖洗殘渣。

並在帶刻度的試管中回收,* * *得到16mL。

(3)加入4ml 15%三氯乙酸,混勻,靜置,過濾。(4)取濾液,處理並測定相同血藥濃度。(5)公式如下:

第6頁

測量管子的光密度

遊離磺胺含量= - 0.00375毫克/毫升* 10標準管光密度。

動詞 (verb的縮寫)實驗結果

時間沒有。1 2 3平均值25min 0.160 0.160 0.160 0.160表1:30min 1h 2h 3h 0.258/0.450 0 0.640 0 0.189 0.210//0.. 484樣品濃度25min 0.293表三:藥物濃度(mg/ml) 30min 1h 2h 3h肝臟0.384/0.8161.1700.886腎臟4.3肌肉7.09 VI。結果討論和總結。

第7頁

1,股動脈分離手術。

由於缺乏手術機會、經驗和動手能力,分離股動脈需要花費很長的時間和精力。所以10分鐘的血樣不是及時取的,而是25分鐘取的。

股動脈分離采血的註意事項;

股動脈采血時註意動靜脈的區分和鈍性分離;心臟附近穿線結紮時不要刺破神經;少穿肌肉和皮膚;分離時註意神經的分離。采血後註意清理血管內的血液,避免堵塞血管;下次采血時血不能流出,用手指輕輕按壓,排出血管內的血塊。

第8頁

2、分光光度計的使用操作。

因為測定吸光度要用壹套比色杯,但在實際操作中,比色杯使用混亂,吸光度的測定存在較大誤差。使用分光光度計的註意事項:

(1)以防止光電池疲勞。不測量時,必須打開比色皿的黑盒蓋,切斷光路,以延長光電管的使用壽命。

(2)手持比色皿時,手指只能握住比色皿的磨砂玻璃面,不要接觸比色皿的透光面,以免汙染。

第9頁

(3)清洗比色皿時,壹般先用水沖洗,再用蒸餾水沖洗。每次實驗後立即清洗比色皿。

(4)測量有色溶液的吸光度時,壹定要用有色溶液多次沖洗比色皿內壁,以免改變有色溶液的濃度。另外,在測定壹系列溶液的吸光度時,通常是按照從稀到濃的順序測定,以減少測量誤差。

(5)在實際分析工作中,根據溶液濃度的不同,通常選用不同槽厚的比色皿,將溶液的吸光度控制在0.2 ~ 0.7。3.實驗中的錯誤總結:

第10頁

在(1)25分鐘和30分鐘時,由於股動脈分離不當,從耳動脈采血。但由於采血時間較長,血樣加入蒸餾水中時已經有很多血塊,所以前兩次測得的血藥濃度較小。但在采血壹小時時,由於操作不當,多取了血樣,使得1h測得的數據過大,無法讀取吸光度數據。

(2)實驗操作中沒有嚴格的要求。加樣時用的是移液管而不是精確的移液管,所以藥物的體積壹定是導致數據不準確的重要因素。

(3)吸光度的測量存在較大誤差。吸光度值要控制在0.2-0.7之間,測出來的值會比較準確,但是有些測出來的數據超出了這個範圍,所以有誤差。

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