2.盛放血細胞的容器最好是塑料的。雞血細胞釋放出破碎的DNA後，容易被玻璃容器吸附，因為細胞中DNA的含量本來就比較少，再被玻璃容器吸附到壹部分，提取到的DNA就更少了。因此，在實驗過程中最好使用塑料燒杯和試管，這樣可以減少 DNA 在提取過程中的損失。
3.獲得更純凈DNA的關鍵步驟。
（1）充分攪拌雞血細胞液DNA存在於雞血細胞核中。將雞血細胞液與蒸餾水混合後，必須用玻璃棒朝壹個方向快速攪拌，以加速雞血細胞的破裂，使 DNA 釋放出來。
（2）必須使用冷酒精沈澱DNA實驗前必須準備好大量體積分數為95%的酒精，並在冰箱中（至少5S以下）保存至少24小時。
（3）正確攪拌含懸浮液的溶液實驗的第3、5、7步需要用玻璃棒攪拌。教師應提醒學生，在步驟 3 和 5 中，玻璃棒不能直接插入燒杯底部，攪拌時動作要輕柔，以便獲得更完整的 DNA 分子。第7步，將玻璃棒插入燒杯中溶液的中間，用手緩慢轉動510分鐘。
三、參考文獻
實驗原理補充介紹
1．DNA 的釋放 DNA 位於雞血細胞的細胞核中，正常情況下是不會釋放出來的。為了使 DNA 從細胞核中釋放出來，在雞血細胞中加入蒸餾水並攪拌。蒸餾水對雞血細胞來說是壹種低滲液體，水可以大量進入血細胞，導致血細胞破裂。同時，再加上攪拌的機械作用，加速了雞血細胞的破裂（細胞膜和核膜破裂），從而釋放出 DNA，當然還有 RNA。不過，釋放出的 DNA 和 RNA 有大量與蛋白質結合的趨勢。
2.DNA與蛋白質的分離 根據二者的特點，即在較高濃度的氯化鈉溶液中（物質濃度為2 moL/L），核蛋白容易解聚，遊離出DNA。而DNA在較高濃度的氯化鈉溶液中溶解度很高，Na+與帶負電荷的DNA結合成DNA鈉鹽。此時，DNA就溶解在溶液中了。
3.DNA的沈澱和獲得利用DNA在較低濃度氯化鈉溶液中溶解度小的原理，向含有DNA的較高濃度氯化鈉溶液中加入大量（300 mL）蒸餾水，稀釋氯化鈉溶液，使DNA的溶解度減小，而蛋白質的溶解度增大（這就是蛋白質的鹽溶現象），使兩者分離。此時，再加上不斷攪拌，溶解度下降的 DNA 逐漸呈絲狀。過濾掉蛋白質，就可以得到 DNA 的粘性物質。如離心法較好，以4000 r/min的轉速，離心15 min，除去上清液（含蛋白質），留下含DNA的沈澱。
4.DNA再溶解後，用較高濃度的氯化鈉溶液溶解DNA粘液。
5.DNA 的沈澱和濃縮 去除蛋白質的核酸溶液必須進壹步沈澱和濃縮。最常用的方法是酒精沈澱。即在含Na+的DNA溶液中，加入相當於兩倍體積分數的95%冷酒精溶液，混合後可使DNA沈澱、濃縮，形成含雜質較少的DNA細絲，懸浮在溶液中。如果絲狀物較少，可將混合物在冰箱中冷卻幾分鐘。可以通過緩慢旋轉玻璃棒來卷起濃縮的 DNA 細絲（因為玻璃棒會吸附 DNA）。
6.鑒定 DNA 本實驗中鑒定 DNA 的方法是二苯胺法（配方見下面的 "藥品制備"）。二苯胺法的原理是：DNA中的嘌呤核苷酸在脫氧核糖酸上生成ω-羥基-γ酮戊二醛，它與二苯胺作用而呈現藍色（溶液呈淡藍色）。
溶液藍色的深淺與溶液中 DNA 的含量有關。
二苯胺試劑的制備
液體 A：將 15 g 二苯胺溶於 100 mL 冰醋酸中，然後加入 15 mL 濃硫酸，保存在棕色瓶中。如果冰乙酸已結晶，則需要加溫待其融化後再使用。
液體 B：乙醛體積分數為 0.2%。
配制：在 10 mL A 液中加入 0.1 mL B 液，即可使用。
另壹種DNA的粗提取和鑒定方法
1．材料 儀器
新鮮菜花（或蒜黃、菠菜）。
塑料燒杯、量筒、玻璃棒、尼龍紗布、瓷研缽、試管、試管架、試管架、漏鬥、酒精燈、石棉網、三腳架、火柴、刀片、天平。
研磨液、體積分數為 95%的酒精溶液、二苯胺試劑、蒸餾水。
2.方法步驟
（1）DNA的粗提取
①材料準備 新鮮花椰菜和體積分數為95%的酒精溶液放入冰箱冷凍室至少24小時。
②材料取樣 稱取30 g花椰菜，去梗切碎。
③研磨 將切碎的黃花菜放入研缽中，倒入 10 mL 研磨液，研磨 10 min。
④過濾 在漏鬥中墊上尼龍紗布，將黃花菜研磨液過濾後倒入燒杯中（有條件的學校可將其倒入塑料離心管中進行離心，轉速為1 000r/min，離心25 min，取上清液放入燒杯中）。將上清液放入燒杯中）。將上清液放入 4 ℃冰箱中冷藏幾分鐘，然後取上清液。
⑤加入冷酒精 將兩倍體積的上清液倒入兩倍體積的 95%冷酒精溶液中，用玻璃棒輕輕攪拌溶液（玻璃棒不能直接插入燒杯底部）。沈澱 35 分鐘後，出現白色 DNA 絮狀物。慢慢轉動玻璃棒，絮狀物會纏繞在玻璃棒上。
（2）DNA 的鑒定
①二苯胺試劑的制備 取 0.1 mL B 液，滴入 10 mL A 液中，混勻。
② 鑒定 取 4 mL DNA 提取液於試管中，加入 4 mL 二苯胺試劑，混勻，觀察溶液顏色（不變為藍色）。用沸水浴（100 ℃）加熱 10 分鐘。在加熱過程中，隨時註意試管中溶液顏色的變化（逐漸呈現淡藍色）。
研磨液的配制方法
三羥甲基氨基甲烷：10.1 g（相對分子質量為 121.14），溶於 50 mL 蒸餾水中，用鹽酸調節 pH 值至 8.0，濃度為 2 moL/L，然後加入下列藥物。
NaCl：8.76 g（相對分子質量 58.44）
EDTA：37.2 g（相對分子質量 372.24）
SDS：20 g（相對分子質量 288.3）
上述藥品全部溶解後，用蒸餾水配成 1000 mL 溶液。室溫低於 20℃時，SDS 有沈澱析出，此時需升高溫度，以溶解 SDS。如果事先配制好的研磨液中有沈澱，則應升溫使沈澱溶解後再使用。
研磨液中幾種藥物的作用
SDS（十二烷基硫酸鈉）：可使蛋白質變性，與 DNA 分離。
EDTA（乙二胺四乙酸二鈉）：是DNA酶的抑制劑，可防止DNA酶在細胞破碎後降解DNA。
氯化鈉溶液的物質濃度為0.15 moL/L：能很好地溶解DNA。
Tris/HCl：提供壹個緩沖體系，DNA在其中得到穩定。Tris/HCl：提供穩定 DNA 的緩沖體系。(Tris 是三(羥甲基)氨基甲烷）
DNA 的其他鑒定方法 紫外線照射法對鑒定 DNA 非常有效。具體鑒定方法如下。
1.制備染色劑。用蒸餾水配制百萬分之五的溴化乙錠（EB）溶液。
2.在蠟紙上擦拭玻璃棒上纏繞的白色絮狀物，然後滴 1 滴 EB 溶液進行染色。
3.
3.將蠟紙放在紫外燈（260 nm）下，可見橘紅色熒光（DNA 的紫外吸收峰值在 280 nm）。