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菌落 PCR 的具體方法

1.制備菌落 PCR 混合液(俗稱 pcr 混合液)

Taq 緩沖液(10×) 180 ul

dNTP (2.5 mM) 20~25 ul

Primer Forward (primer concentration at 10Pmol) 5 ul

Primer Reverse (primer concentration at 10Pmol) 5 ul

ddH2O 720 ul

Taq (2U/ul) 12~15 ul

2.在室溫下隨機選擇平板內的單個菌落,用消毒牙簽或槍頭挑取單個菌落(強調是單個,而不是雙克隆),在 LB 瓊脂糖平板上復制單個菌落;然後將沾有細菌的牙簽或槍頭放入相應的 PCR8 管或 96 孔 pcr 反應板中(96 孔反應板和所選菌落都有很好的標記,如板上的點是 1#、2#、3# ...... 那麽 96 空反應板也相應標上 1#、2#、3#)。(......,以便擴增培養後篩選到克隆),然後將挑取的 96 個單克隆菌落轉移到 48 孔板培養基中進行培養,挑取單克隆菌落進行轉移後,由於挑取的菌落染色在 96 孔反應板上,可以用相應的通用引物與事先配制好的 PCR 混合物混合均勻後加入到 96 孔反應板中進行反應。

3.將帶有細菌的 PCR 混合物放入 PCR 儀中,在正常條件下進行擴增。

4.在擴增反應液中加入溴酚藍或其他染料,電泳檢測是否獲得目的片段。如果有,則為陽性克隆。

5、將已篩選出的陽性克隆對應的菌株選取到 96 孔反應板中,37 度下繼續培養到壹定時間即可提取質粒,測序驗證是否為所需的目的基因

註意:引物的設計非常關鍵。壹般來說,如果是定向克隆,可以使用載體上的通用引物;例如 pET 系列可以使用 T7 通用引物。如果是非定向克隆(如單酶消化或平端連接),則壹個引物用載體上的,壹個引物用目的基因上的,這樣更容易識別,出錯的概率也很低。PCR條件的選擇接近最佳,同時挑選菌種不宜過多,否則會出現非特異性擴增。

所用引物的濃度不宜過高,濃度過高會導致非特異性擴增,反應的循環次數也不宜過多,壹般不超過25次。同時由於擴增片段的 GC 含量問題,有的 GC 含量很低,有的很高,導致菌落 PCR 不容易擴增出目標條帶,這裏建議設置 PCR 程序時以高 GC 溫度為上限,每個循環下降 0.2 度左右。

48孔板 96孔反應板

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