1．稱量 按培養基配方比例依次準確地稱取牛肉膏、蛋白腖、NaCl放入燒杯中。牛肉膏常用玻棒挑取，放在小燒杯或表面皿中稱量，用熱水溶化後倒入燒杯。也可放在稱量紙上，稱量後直接放入水中，這時如稍微加熱，牛肉膏便會與稱量紙分離，然後立即取出紙片。蛋白腖很易吸潮，在稱取時動作要迅速。另外，稱藥品時嚴防藥品混雜，壹把牛角匙用於壹種藥品，或稱取壹種藥品後，洗凈、擦幹，再稱取另壹藥品，瓶蓋也不要蓋錯。
2．溶化 在上述燒杯中可先加入少於所需要的水量，用玻棒攪勻，然後，在石棉網上加熱使其溶解。待藥品完全溶解後，補充水分到所需的總體積。如果配制固體培養基，將稱好的瓊脂放入已溶化的藥品中，再加熱溶化，在瓊脂溶化的過程中，需不斷攪拌，以防瓊脂糊底使燒杯破裂。最後補足所失的水分。
3．調pH 在未調pH前，先用精密pH試紙測量培養基的原始pH值，如果pH偏酸，用滴管向培養基中逐滴加入1mol/L NaOH，邊加邊攪拌，並隨時用pH試紙測其pH值，直至pH達7．6。反之，則用1mol/L HCl進行調節。註意pH值不要調過頭，以避免回調，否則，將會影響培養基內各離子的濃度。 對於有些要求pH值較精確的微生物，其pH的調節可用酸度計進行（使用方法，可參考有關說明書）。
4．過濾 趁熱用濾紙或多層紗布過濾，以利結果的觀察。壹般無特殊要求的情況下，這壹步可以省去（本實驗無需過濾）。很多都是不需要過濾的。
5．分裝 按實驗要求，可將配制的培養基分裝入試管內或三角燒瓶內。分裝裝置見圖Ⅴ-1。 分裝過程中註意不要使培養基沾在管口或瓶口上，以免沾汙棉塞而引起汙染。 (1)液體分裝分裝高度以試管高度的1/4左右為宜。 (2)固體分裝分裝試管，其裝量不超過管高的1/5，滅菌後制成斜面，如圖Ⅴ-2。分裝三角燒瓶的量以不超過三角燒瓶容積的壹半為宜。 (3)半固體分裝試管壹般以試管高度的1/3為宜，滅菌後垂直待凝。
6．加塞 培養基分裝完畢後，在試管口或三角燒瓶口上塞上棉塞，以阻止外界微生物進入培養基內而造成汙染，並保證有良好的通氣性能（棉塞制作方法附本實驗後面）。
7．包紮 加塞後，將全部試管用麻繩捆紮好，再在棉塞外包壹層牛皮紙，以防止滅菌時冷凝水潤濕棉塞，其外再用壹道麻繩紮好。用記號筆註明培養基名稱、組別、日期。三角燒瓶加塞後，外包牛皮紙，用麻繩以活結形式紮好，使用時容易解開，同樣用記號筆註明培養基名稱、組別、日期。
8．滅菌 將上述培養基以1．05kg/cm2（15磅/英寸2），121．3℃， 20分鐘高壓蒸汽滅菌。如因特殊情況不能及時滅菌，則應放入冰箱內暫存。
9．擱置斜面 將滅菌的試管培養基冷至50℃左右，將試管棉塞端擱在玻棒上，擱置的斜面長度以不超過試管總長的壹半為宜。
10．無菌檢查 將滅菌的培養基放入37℃的溫室中培養24—48小時，以檢查滅菌是否徹底。 1．活材料：蘇雲金芽孢桿菌（Bacillus thuringiensis）菌劑。 2．培養基：牛肉膏蛋白腖瓊脂培養基（附錄三、1） 3．器材：90ml無菌水、9ml無菌水、無菌平皿、lml無菌吸管、天平、稱樣瓶、記號筆、玻璃刮鏟等。 四、實驗方法 1．樣品稀釋液的制備 準確稱取待測樣品l0g，放入裝有90ml無菌水並放有小玻璃珠的250ml三角瓶中，用手或置搖床上振蕩20min，使微生物細胞分散，靜置20-30s，即成10-1稀釋液；再用1ml無菌吸管，吸取10-1稀釋液lml，移入裝有9ml無菌水的試管中，吹吸3次，讓菌液混合均勻，即成10-2稀釋液；再換壹支無菌吸管吸取10-2稀釋液1ml，移入裝有9ml無菌水的試管中，也吹吸三次，即成l0-3稀釋液；以此類推，連續稀釋，制成10-4、10-5、10-6、10-7、10-8、10-9等壹系列稀釋菌液。 平板計數法中樣品的稀釋和稀釋液的取樣培養 用稀釋平板計數時，待測菌稀釋度的選擇應根據樣品確定。樣品中所含待測菌的數量多時，稀釋度應高，反之則低。