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無法觀察到人類染色體標本制備實驗報告的原因

外周血淋巴細胞培養和染色體制備技術已廣泛應用於細胞遺傳學研究和染色體疾病診斷。由於該技術需要較長的細胞培養時間和復雜的制備過程,容易受到溫度、濕度、PH值、溶血和凝血等因素的影響,導致實驗失敗。因此,控制好每個實驗步驟對於實驗的成敗至關重要。但仍有部分標本不能進行核型分析,並著重分析了其失敗的原因。

壹、實驗步驟和控制措施

1.標本采集、接種和培養:

對患者采血部位進行常規消毒,用5mL壹次性無菌註射器或采血針采集血液約3mL,註射5mL無菌肝素鋰抗凝管,倒置混勻。加強門診和住院部標本采集人員的培訓。標本必須無菌采集,以避免溶血和凝血。

在生物安全櫃中,用壹次性無菌註射器(2.5mL)抽取抗凝劑,接種於培養瓶(含5mL人外周血淋巴細胞培養液),每瓶0.4mL,至少接種兩瓶。接種後,輕輕水平搖動幾次,混勻。在37±0.5℃的兩個培養箱中直立66 ~ 72小時,第二天觀察培養液有無凝固、溶血或細菌生長。所有用於細胞培養和細胞學處理的培養液和試劑必須經過預先檢驗,新的壹批試劑到貨後必須進行批間驗證。

2.細胞收獲和生產:

培養結束前,在生物安全櫃中的培養基中加入秋水仙堿,秋水仙堿的終濃度為0.1~0.5μg/mL,輕輕搖勻,置於37±0.5℃的培養箱中處理1.5h,秋水仙堿處理後,小心地從培養箱中取出培養瓶,用吸管將培養物吸入離心管中,離心:1500r/m×65438+棄去上清液,加入8 ~ 10ml 37℃孵育的0.075mol/L KCl低滲溶液,用吸管吹成細胞懸液,置於37℃水浴中25分鐘。在每個離心管中加入1.5mL卡諾固定液(甲醇:乙酸3:1),輕輕吸吹,室溫靜置10min。離心機:1500轉/米×10分鐘,棄去上清液。然後在離心管中加入8mL卡諾固定液,立即用吸管吹成單細胞懸液,室溫放置30min,離心:1500r/m×10min,棄去上清液,如此反復3次。秋水仙堿處理時間過長,有許多分裂細胞和短染色體;反之,則少而細長。這兩種情況都不適合觀察形態和計數,要準確把握秋水仙堿的濃度和時間。低滲使紅細胞膜破裂,淋巴細胞腫脹,低滲治療的濃度和時間要適當。但混合細胞固定後壹定要輕,否則會造成細胞破裂和染色體丟失。

將0.2~0.5 mL新鮮固定液滴入離心管中,用吸管將淋巴細胞團輕輕吹成細胞懸液,從冰箱中取出冰片,每片加入2~3滴懸液,75℃烘烤2 ~ 3小時。載玻片壹定要冰浴清洗,否則染色體分散不好。在制作過程中,如發現細胞不腫脹,細胞膜不破裂,染色體成簇,無法拉伸,可延長固定時間數小時或適當增加冰醋酸比例。

3.捆紮和染色

將50毫升pH值為7.4的1/15M磷酸鹽緩沖液倒入立式染缸中,加入0.5毫升2.5%胰蛋白酶溶液,混勻。胰酶消化後,用10%吉姆薩染液染色3min,然後用鑷子取出載玻片,用自來水輕輕沖洗兩面,再用電吹風吹幹。每次膠帶顯影都要做實驗前處理,以確定正確的膠帶顯影時間,不能盲目處理所有載玻片。判斷顯帶效果,要多觀察長度適中的分裂相,不能僅憑1和2分裂相的顯帶效果來決定下壹次顯帶時間。

二,培訓失敗的原因分析

就2015而言,到目前為止,有1500份標本,10份標本培養生產後不能用於染色體分析。外周血染色體的制備是壹個手工項目,過程復雜,每個環節都要嚴格控制。這個房間的工作人員都經過嚴格的培訓,考試合格後才能上崗。這些10不合格標本的原因已全部排除為操作人員失誤所致。實驗室的設施和環境都符合實驗要求。所以我們對這6位患者進行了電話回訪,發現* * *的壹個共同特點就是使用了消炎藥,尤其是兒科住院患者。

抗生素可能抑制淋巴細胞轉化,影響培養質量。對於這部分患者,我們建議停藥後至少兩周再次抽血。有4例患者采血培養後淋巴細胞計數增高,可用於染色體分析,均有報道。1患者再次采血後仍無有效分裂相,電話告知仍在服用中藥消炎藥。仍有5名患者尚未復查。

三。糾正和預防措施

對於外周血染色體制備失敗的情況,我們先排除人為誤差和實驗室設施環境的影響,再考慮是否是同等條件下病例本身的原因。因此采取的糾正措施是:告知患者標本培養不合格,原因可能與使用消炎藥有關。建議停藥至少兩周再抽血。

目前我們實驗室在采集標本前總是會詢問患者的病史,所以可以通過詢問是否使用消炎藥來防止培養失敗率。我告訴過妳染色體檢查不是急件,可以停藥後再檢查。

總之,要想制備好染色體標本進行核型分析,細胞培養、制作、顯帶的每壹步都不可忽視。需要在操作過程中不斷總結經驗,才能提高外周血染色體標本制備的成功率。

遺傳組楊莉/文

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